Introducción
El coquillo amarillo (Cyperus esculentus) es la segunda maleza más problemática después del amaranto Palmer (Amaranthus palmerii) y la tercera maleza más frecuente en el cultivo de camote en Carolina del Norte (Webster 2010) (Figura 1) después del amaranto y la maleza alfombra (Mollugo verticillata). El coquillo amarillo es una juncia perenne con un hábito de crecimiento erguido. Las juncias a menudo se confunden con las gramíneas y los juncos debido a que su apariencia es similar. Sin embargo, las juncias se distinguen fácilmente de las gramíneas porque tienen tallos triangulares en lugar de los tallos redondos u ovalados de las gramíneas o juncos (DeFelice 2002) (Figura 2). Las plantas de la familia de las juncias se pueden identificar fácilmente al cortar el tallo con un cuchillo y observar si el tallo es triangular.
El coquillo amarillo también se puede confundir fácilmente con otra especie de juncia frecuente: el coquillo morado. Varias características clave pueden ayudarlo a distinguir fácilmente entre el coquillo amarillo y el morado. La primera es la lámina foliar. La del coquillo amarillo se estrecha hasta una punta larga y afilada, mientras que el coquillo morado tiene una punta más roma (Figura 3). Otra característica clave es cómo crecen los tubérculos y la forma en que se unen a la planta madre. En el coquillo amarillo, los tubérculos crecen y se unen directamente a la planta madre. El coquillo morado, sin embargo, tiene tubérculos que crecen en forma de cadena lejos de la planta madre. Una última diferencia son los capítulos, que son amarillos en el coquillo amarillo y rojo violáceo en el coquillo morado (Bryson y DeFelice 2009) (Figura 4). También hay especies de juncos anuales que emergen de la semilla cada año, lo que a menudo confunde la identificación del coquillo amarillo. Muchas de estas especies crecen en matas densas, algunas más pequeñas o tan grandes como la del coquillo amarillo. Algunas de estas especies son frecuentes en los campos de cultivo y otras no.
Figura 1. Coquillo amarillo en el cultivo de camote.
Figura 2. Corte transversal del tallo de una juncia. Fuente: Guía de identificación de malezas de Virginia Tech.
Figura 3. Comparación de la lámina foliar entre el coquillo amarillo y el morado. Fuente: Guía de identificación de malezas de Virginia Tech.
Figura 4. Capítulo del coquillo amarillo en comparación con el morado.
Reproducción y Hábito de Crecimiento del Coquillo Amarillo
El coquillo amarillo puede crecer y sobrevivir en casi cualquier clima, pero prefiere las áreas cálidas y húmedas (DeFelice 2002). Esta preferencia ambiental ayuda a explicar por qué el coquillo amarillo representa un problema en todo el sureste de los Estados Unidos. El coquillo amarillo se reproduce y se esparse produciendo rizomas y tubérculos. Estos tubérculos pueden sobrevivir en el suelo de tres a cinco años y germinar a varias pulgadas de profundidad. La cantidad de tubérculos en el suelo puede aumentar rápidamente; un solo tubérculo puede producir más de 360 tubérculos en 16 semanas durante la temporada de cultivo (Webster 2005a).
El coquillo amarillo se propaga rápidamente en un campo. Si no se interviene, crecerá en áreas que se ampliarán en aproximadamente 1 yarda cuadrada por año (Webster 2005b). El cultivo puede esparcir rápidamente tubérculos y rizomas de coquillo amarillo a través de los campos y establecer nuevas áreas. Con los equipos de cultivo, los tubérculos también se pueden transportar de un campo a otro. Para prevenir la propagación del coquillo amarillo a nuevos campos, es mejor cultivar los campos infestados con coquillo amarillo en último lugar y luego limpiar a fondo el equipo de cultivo antes de abandonar el campo (Webster 2005b; Meyers y Shankle 2016). Una opción para limpiar el equipo de cultivo es lavarlo a presión en un área no cultivada.
Impactos del Coquillo Amarillo en el Rendimiento y la Calidad del Camote
El coquillo amarillo compite con el camote por el agua, los nutrientes, la luz y el espacio. Esta competencia a menudo provoca una disminución del rendimiento y la calidad. El coquillo amarillo puede afectar la calidad al producir camotes pequeños o al desarrollar rizomas a través de las raíces de almacenamiento (Figura 5). La pérdida de rendimiento por interferencia del coquillo amarillo depende de la densidad del coquillo amarillo. Incluso con tan solo 15 plantas de coquillo amarillo por yarda cuadrada dos semanas después del trasplante de camote, la pérdida de producción comercializable prevista es hasta un 35 por ciento menor que la de camote libre de malezas. A densidades de más de 60 plantas de coquillo amarillo por yarda cuadrada dos semanas después del trasplante de camote, la pérdida de producción comercializable es superior al 60 por ciento (Meyers y Shankle 2015). Otras investigaciones han demostrado una pérdida de producción comercializable de 623 libras por acre por cada semana durante la temporada de cultivo en la que se permite que el coquillo amarillo compita con el cultivo (Beam 2016).
Figura 5. Rizoma de coquillo amarillo que crece a través de una raíz de almacenamiento de camote. Fuente: Stephen L. Meyers, Universidad Estatal de Misisipi.
Control del Coquillo Amarillo en el Cultivo de Camote
Las opciones de control para el coquillo amarillo en el cultivo de camote son limitadas. Los únicos herbicidas registrados para su aplicación en el cultivo de camote y que tienen actividad sobre el coquillo amarillo son el fomesafen (Reflex) y S-metolacloro (Dual Magnum). El fomesafen solo tiene actividad previa a la emergencia en el coquillo amarillo. El fomesafen debe aplicarse al lecho preformado antes del trasplante de camote y antes de que emerja el coquillo. Además, el fomesafen no debe aplicarse junto con la flumioxazina. Más bien, los productores deben seleccionar fomesafen o flumioxazina dependiendo de los perfiles de malezas de sus campos en particular. También debe tenerse en cuenta que, si bien el fomesafen puede eliminar el coquillo amarillo, es poco probable que logre el control completo. Existen posibles problemas de arrastre (carryover) con fomesafen, por lo que se debe leer las etiquetas de los herbicidas detenidamente antes de su uso. Del mismo modo, el S-metolacloro solo tiene actividad previa a la emergencia en el coquillo amarillo. Si ha emergido el coquillo amarillo, el S-metolacloro no controlará esta maleza. El S-metolacloro debe aplicarse al camote libre de malezas de 7 a 14 días después del trasplante para reducir el riesgo de dañar las raíces de almacenamiento del camote en desarrollo. Si S-el metolacloro se aplica al camote demasiado pronto después del trasplante y se producen fuertes lluvias, pueden producirse daños, como el acortamiento y el redondeo de las raíces (Blankenship et al. 2024; Meyers et al. 2010; Meyers et al. 2013).
Otros métodos para controlar el coquillo amarillo en el cultivo de camote incluyen el cultivo y la extracción a mano. El equipo de cultivo estándar puede ser eficaz para eliminar el coquillo amarillo entre las hileras si el cultivo es oportuno (J.R. Schultheis, comunicación personal). Los tubérculos del coquillo amarillo se asientan con rapidez, por lo que para controlar eficazmente el coquillo amarillo con el cultivo, hágalo poco después de que emerja para que las plantas mueran y no se les permita desarrollar tubérculos que puedan distribuirse nuevamente en un campo durante el proceso de cultivo (Webster 2005a; Meyers y Shankle 2016). Para eliminar el coquillo amarillo en hilera, necesitaría un equipo de cultivo especializado. Varias empresas fabrican escardadores de dedos de plástico para el cultivo en hilera de camote y otros cultivos de hortalizas. Jonathan Schultheis, especialista en camote de la Extensión de la Universidad Estatal de Carolina del Norte, declaró que el cultivo solo se puede realizar hasta que la canopia comience a cerrarse, aproximadamente de 30 a 35 días después del trasplante (conversación personal del 2 de marzo de 2016).
La eliminación manual del coquillo amarillo es posible, pero es muy costosa (de 200 USD a 400 USD por acre) en comparación con otros métodos de control de malezas (Ted. Burch, productor, comunicación personal en una conversación telefónica el 23 de enero de 2018). Al remover el coquillo amarillo manualmente, se deben quitar tanto el tallo como el sistema radicular. El coquillo amarillo puede ser difícil de remover manualmente, ya que es propenso a romperse en la línea del suelo y puede volver a crecer rápidamente.
Referencias
Blankenship, C. D., K. M. Jennings, D. W. Monks, S. L. Meyers, D. L. Jordan, J. R. Schultheis, D. H. Suchoff, L. D. Moore, S. J. Ippolito. 2024. “Effect of S-metolachlor and flumioxazin herbicides on sweetpotato treated with and without activated charcoal applied through transplant water.” Weed Technology 38, e50. doi:10.1017/wet.2024.48 ↲
Beam, S. C. Influence of Herbicides on the Development of Internal Necrosis of Sweetpotato and Herbicide Tolerance of Sweetpotato. Master’s thesis. Raleigh, NC: North Carolina State University, 2016. 88 p. ↲
Bryson, C. T., M. S. DeFelice eds. 2009. Weeds of the South. Athens, GA: University of Georgia Press. 468 p. ↲
DeFelice, M. S. 2002. “Yellow Nutsedge Cyperus esculentus—Snack Food of the Gods.” Weed Technology 16:901-907. ↲
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Meyers, S. L., K. M. Jennings, J. R. Schultheis, D. W. Monks. 2010. “Evaluation of Flumioxazin and S-metolachlor Rate and Timing for Palmer Amaranth (Amaranthus palmeri) Control in Sweetpotato.” Weed Technology 24:495-503. ↲
Meyers, S. L, M. W Shankle. 2015. “Interference of Yellow Nutsedge (Cyperus esculentus) in ‘Beauregard’ Sweet Potato (Ipomoea batatas).” Weed Technology 29:854-860. ↲
Meyers, S. L, M. W. Shankle. 2016. “Postemergence Yellow Nutsedge Management in Sweetpotato.” Weed Technology 30:148-153. ↲
Meyers, S. L., K. M Jennings, D. W. Monks, D. K. Miller, M. W. Shankle. 2013. “Rate and Application Timing Effects on Tolerance of Covington Sweetpotato to S-metolachlor.” Weed Technology 27:729-734. ↲
North Carolina State University. 2016. TurfFiles: Center for Turfgrass Environmental Research & Education. North Carolina State University. ↲
Webster, T. M. 2005a. “Mulch Type Affects Growth and Tuber Production of Yellow Nutsedge (Cyperus esculentus) and Purple Nutsedge (Cyperus rotundus).” Weed Sci 53:834-838. ↲
Webster, T. M. 2005b. “Patch Expansion of Purple Nutsedge (Cyperus rotundus) and Yellow Nutsedge (Cyperus esculentus) With and Without Polyethylene Mulch.” Weed Sci 53:839-845. ↲
Webster, T. M. 2010. “Weed Survey—Southern States. Vegetable, Fruit, and Nut Crops Subsection.” Proc South Weed Sci Soc 63. ↲
Publication date: Nov. 26, 2024
AG-AG-837S
There is an alternate English language version of this document here: Management of Yellow Nutsedge in Sweetpotato
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