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Traducción

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Andres D. Sanabria-Velazquez1, Tika Adhikari1 and Frank Louws1,2

1Department of Entomology and Plant Pathology, North Carolina State University, 1575 Varsity Drive, VRB Module 6, Raleigh, NC 27695

E-mail: adsanabr@ncsu.edu and tbadhika@ncsu.edu

2Department of Horticultural Science, North Carolina State University, 118 Kilgore Hall Raleigh, NC, 27695-7609.

E-mail: fjlouws@ncsu.edu

Introducción

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La infección de fresa por Phytophthora cactorum ocurre en suelos mal drenados, sobre riego, o durante largos períodos de lluvia en climas cálidos. Los síntomas de la enfermedad aumentan durante los períodos de alta necesidad de agua, como después de que se establecen los trasplantes, durante el clima cálido y seco o a medida que aumenta la carga de fruta. El patógeno se ha vuelto muy importante en los últimos 10-15 años (1999-2014).

Síntomas y signos

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La característica más diagnóstica de las plantas con síntomas avanzados es un colapso de las plantas y una decoloración roja oscura profunda de la corona (Figura SS-1). El retraso en el crecimiento de las plantas o el marchitamiento de las hojas jóvenes son los primeros síntomas y pueden aparecer en cualquier momento durante la temporada. Las plantas infectadas pueden permanecer atrofiadas, o el follaje puede volverse azulado y toda la planta puede marchitarse rápidamente hasta el colapso total. El marchitamiento a menudo se acompaña de síntomas de “sequía” en las hojas, como el color marrón de los márgenes de las hojas que a menudo progresan entre las venas y una línea afilada entre el tejido dañado y el sano (Figura SS-2). Las plantas pueden romperse libremente en la parte superior de la corona cuando se tiran para el muestreo. Las plantas pueden ocurrir en áreas bajas y luego a menudo se agrupan, o pueden aparecer más en un patrón disperso, especialmente si la enfermedad se produjo en plantas infectadas (Figura SS-3). Cuando la corona se infecta por primera vez, una sección longitudinal revela tejido empapado en agua y de color marrón claro, pero, a medida que avanza la enfermedad, aparece una necrosis extensa que es uniformemente marrón y no restringida al tejido vascular (Figura SS-1; Figura SS-2). La decoloración marrón oscuro puede aparecer en la base, el centro o la parte superior de la corona. Las raíces unidas al área afectada de la corona son frecuentemente negras en el punto de unión y comúnmente tienen oósporas de diagnóstico en el tejido de la raíz (ver más abajo; Figura SS-4). Los sistemas radiculares también se decoloran con frecuencia y tienen un bajo nivel de raíces fibrosas (secundarias y terciarias). En contraste, el tejido de la corona infectado por el patógeno de la antracnosis (podredumbre de la corona de antracnosis) adquiere un color canela más oscuro, es más firme, a menudo tiene una apariencia “veteada” y las raíces tienden a permanecer de color blanco a marrón en el punto de unión. Además, el sistema radicular tiende a permanecer fibroso con una apariencia blanca saludable.

La enfermedad puede aparecer en las instalaciones de producción de trasplantes cuando se introduce en puntas infectadas o a través de fuentes de agua contaminada. Las puntas no enraízan, las raíces se vuelven negras y los pecíolos inferiores de las hojas se vuelven de color marrón oscuro a negro (Figura SS-5). Las plantas taponadas morirán o permanecerán atrofiadas, especialmente una vez que se detenga el riego frecuente.

La podredumbre de la corona de Phytophthora puede confundirse con la podredumbre de la corona de antracnosis. Se pueden tomar una serie de síntomas diferentes y pasos diagnósticos para discernir entre los dos problemas de pudrición de la corona y estos se destacan en la Figura DP-1.

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Figura SS-1: Decoloración interna de la corona debido a la infección por Phytophthora cactorum.

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Figura SS-2: Marchitez de toda la planta (izquierda) que muestra infección de la corona en la parte superior de la corona. Note que muchas raíces son negras. Las hojas de las plantas marchitas a menudo tienen un síntoma de sequía (derecha) con una línea distinta entre el tejido dañado por la corriente de aire y el tejido sano.

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Figura SS-3: Uno de los primeros campos en Carolina del Norte que fue diagnosticado con podredumbre de la corona de Phytophthora a finales de los años 90. Las plantas infectadas murieron y las plantas vecinas crecieron bien. En este caso, las plantas enfermas parecían estar asociadas con la fuente de la planta.

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Figura SS-4: Se raspó tejido de raíz negra adyacente a una corona infectada y se maceró el tejido para revelar oosporas, estructuras sexuales circulares de paredes gruesas, en el tejido de la raíz.

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Figura SS-5: Gama de síntomas causados por Phytophthora cactorum en instalaciones de producción de trasplantes. Los pecíolos de las hojas y los tejidos de las hojas se vuelven negros (arriba). Las plantas permanecen atrofiadas y no forman raíces (abajo a la izquierda muestra trasplantes gravemente enfermos o sanos) y plantas.

Manejo de la enfermedad

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Cultural

  1. Selección y preparación del sitio

    Elija un sitio con un drenaje adecuado del suelo y evite los campos con antecedentes de enfermedades. Plante en camas elevadas, no en puntos húmedos bajos, y are los campos durante la preparación para romper el pie de arado y mejorar el drenaje. La fumigación del suelo puede ayudar a reducir el inóculo.

  2. Use plantas libres de enfermedades

    Use plantas sanas, aunque los síntomas pueden no ser evidentes en el momento de la colocación del campo. Si las puntas estaban infectadas, Phytophthora puede aparecer en los trasplantes y estas plantas deben ser sacrificadas o tratadas antes de la colocación en el campo. Las plantas no sintomáticas pueden albergar el patógeno. En las instalaciones de producción de trasplantes, las plantas deben estar en bancos elevados o en lechos de grava bien drenados para evitar el movimiento de agua de una bandeja a otra y la propagación del patógeno. Evite variedades altamente susceptibles como ‘Sweet Charlie’ en sitios con antecedentes de podredumbre de la corona de Phytophthora.

  3. Monitoreo y manejo

    Usar prácticas de riego adecuadas. No riegue en exceso ya que el inóculo se propaga mediante el agua. No use agua para riego por aspersión de estanques superficiales que puedan albergar el patógeno en campo o instalaciones de trasplante. Si esto es inevitable, comuníquese con los servicios de extensión locales para obtener información sobre cómo reducir el riesgo de problemas de Phytophthora de fuentes de riego.

Control químico

Mefenoxam (Ridomil Gold) y metalaxil (varias formulaciones) han demostrado ser eficaces cuando se aplican a través del riego por goteo. Estos fungicidas se aplican mejor en el otoño poco después de la siembra y cuando se completa el riego por encima de la cabeza para el establecimiento de la planta. En la mayoría de los casos, una aplicación a principios de primavera también es útil cuando comienza el rápido crecimiento de nuevas plantas. El momento del otoño y la primavera coinciden con el rápido crecimiento de las raíces. Se pueden hacer aplicaciones adicionales en la primavera en campos con alta presión de enfermedad. Los fosfonatos no tienen la misma eficacia que el mefenoxam/metalaxil, pero son muy útiles durante la fase de producción de trasplantes donde existen problemas, aplicados como pulverización foliar en campos donde las raíces de fresa están dañadas, y en campos donde se han documentado cepas de Phytophthora resistentes a mefenoxam/metalaxil (esto solo ha ocurrido una vez en el sudeste). Para obtener más información sobre el tiempo y las tasas de uso, consulte nuestra Guía de MIP de fresa en para obtener recomendaciones actuales.

Patógeno

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Phytophthora Crown Rot (Phytophthora cactorum (Lebert y Cohn) J. Schröt.)

Phytophthora cactorum es un patógeno de plantas Oomycete que habita en el suelo. P. cactorum tiene hifas cenocíticas y forma una colonia blanca, ligeramente enmarañada en cultivo (Erwin y Ribeiro, 1996). Las oosporas de P. cactorum son esféricas (24-30 μm), tienen una pared lisa de dos capas y se producen después de la fusión de un anteridio y un oogonio. Antheridia típicamente son paraginos y generalmente se unen al oogonio cerca del tallo oogonial. P. cactorum produce esporangios caducos, en forma de pera (50-60 x 35-40 μm), cada uno en un pedicelo corto (< 4 μm). Los esporangios suelen ser terminales y tienen papilas prominentes (Ellis y Madden, 1998; Erwin y Ribeiro, 1996). P. cactorum es una especie homotálica, lo que significa que las oosporas se pueden encontrar dentro de cultivos aislados individuales (Erwin y Ribeiro, 1996; Hudler, 2013).

La pudrición de la corona parece ser inducida por un patotipo distinto de P. cactorum porque solo los aislados de coronas de fresa enfermas fueron patógenos para la fresa en experimentos de inoculación (Seemüller, 1998).

Procedimientos de diagnóstico

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P. cactorum puede ser aislado del suelo y del tejido de la raíz o corona de las plantas infectadas utilizando medios selectivos. La mayoría de las veces, P. cactorum se aísla usando PPP o PARP y se cultiva en CMA o V8A. Si se aisla del suelo para P. cactorum es importante secar muestras de suelo por un tiempo y luego rehidratarlas antes de aislar (Jeffers y Aldwinckle, 1987). La desinfestación de la superficie de las coronas antes del recubrimiento puede mejorar el aislamiento de P. cactorum. Las oosporas pluróticas de P. cactorum también pueden estar presentes en el tejido de la corona y están comúnmente presentes en las raíces negras inmediatamente adyacentes a las áreas infectadas de la corona (Figura SS-4).

Una característica distintiva de este patógeno en comparación con otras especies de Phytophthora es la naturaleza caduca de los esporangios. La mayoría de los aislados de P. cactorum fructifican fácilmente en el tejido vegetal y en cultivo, sin embargo, si los esporangios están ausentes, la formación puede ser inducida sumergiendo trasplantes de agar de un cultivo de crecimiento activo en una solución de extracto de suelo no estéril al 1,5% (NSSES) e incubando a temperatura ambiente bajo luz fluorescente constante durante 12 a 24 horas (Jeffers y Aldwinckle, 1987).

La podredumbre de la corona de Phytophthora es difícil de discernir de la podredumbre de la corona de antracnosis. Se proporciona una clave de diagnóstico (Figura DP-1). Los ensayos de serología como inmunostrips y otros ensayos están disponibles comercialmente.

El medio más concluyente para identificar un aislado de Phytophthora es a través de técnicas moleculares. Las regiones ITS 1 y 2 del ADNr y las regiones cox 1 y 2 del ADN mitocondrial pueden amplificarse mediante PCR, purificarse y luego secuenciarse. Las secuencias se pueden comparar con las de especies verificadas de Phytophthora registradas en bases de datos como Phytophthora id y Genbank.

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Figura DP-1: Una clave de diagnóstico para discernir si el marchitamiento de la planta se debe a la Antracnosis de la Corona, Phytophthora o un problema abiótico. El tejido de la corona también se puede macerar y analizar mediante un ensayo de serología específico de Phytophthora.

Referencias

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Ellis, M. A., and Madden, L. V. 1998. Leather rot. Pp. 33-35 in: Compendium of Strawberry Diseases, 2nd edition, Maas, J. L. (edt.). APS Press. St. Paul, MN.

Erwin, D. C., and Ribeiro, O. K. 1996. Phytophthora Diseases Worldwide. American Phytopathological Society, St. Paul, MN.

Hudler, G. W. 2013. Phytophthora cactorum. Forest Phytophthoras 3(1). doi:10.5399/osu/fp.3.1.3396

Jeffers, S. N., and Aldwinckle, H. S. 1987. Enhancing detection of Phytophthora cactorum in naturally infested soil. Phytopathology 77:1475-1482.

Seemüller, E. 1998. Crown rot. Pp. 50-51 in: Compendium of Strawberry Diseases, 2nd edition, Maas, J. L. (edt.). APS Press. St. Paul, MN.

Authors

Department Head, Horticultural Science
Horticultural Science
Research Specialist
Entomology & Plant Pathology
Extension Specialist (Small Fruit Production & Pathology)
Entomology & Plant Pathology
Postdoctoral Research Scholar
Entomology & Plant Pathology
Entomology & Plant Pathology

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Publication date: Jan. 9, 2024

There is an alternate English language version of this document here: Phytophthora Crown Rot of Strawberry

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